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糖原PAS 染色液(真菌專(zhuān)用)說(shuō)明書(shū)

更新時(shí)間:2021-04-30點(diǎn)擊次數(shù):1383

產(chǎn)品簡(jiǎn)介:

糖原染色是病理學(xué)中常規(guī)的染色方法之一,McManus 在1946 年最先使用高碘酸-雪夫技術(shù)顯示黏蛋白,該法常用來(lái)顯示糖原和其他多糖,該技術(shù)不僅能顯示糖原,還能顯示中性黏液性物質(zhì)和某些酸性物質(zhì)以及軟骨、垂體、霉菌、真菌、色素、淀粉樣物質(zhì)、基底膜等。過(guò)碘酸(又稱(chēng)高碘酸)是一種強(qiáng)氧化劑,它能氧化糖類(lèi)及有關(guān)物質(zhì)中的1,2-乙二醇基,使之變?yōu)槎?,醛與Schiff 試劑能結(jié)合成一種品紅化合物,產(chǎn)生紫紅色。由于高碘酸還可氧化細(xì)胞內(nèi)其他物質(zhì),使用時(shí)應(yīng)注意選擇好高碘酸濃度和氧化時(shí)間,使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于過(guò)氧化,這是很關(guān)鍵的步驟。

       糖原PAS 染色液(真菌專(zhuān)用)利用真菌含有多糖,經(jīng)過(guò)碘酸氧化暴露出醛基,醛基與無(wú)色Schiff 結(jié)合呈現(xiàn)紅色。該染色法性能穩(wěn)定,特異性強(qiáng);操作簡(jiǎn)捷,僅需0.5h; 低濃度過(guò)碘酸更適用于真菌染色,無(wú)鹽酸乙醇分化液分化步驟。

     產(chǎn)品組成:       

自備材料:

1、蒸餾水

2、系列乙醇

操作步驟(僅供參考)

1、常規(guī)固定(常采用 10%中性福爾馬林), 常規(guī)脫水包埋。脫蠟至水。

2、入過(guò)碘酸溶液,室溫氧化 510min。

3、自來(lái)水沖洗 2 次,蒸餾水浸洗 2 次。

4、入 Schiff Reagent 并加蓋,置于室溫陰暗處浸染 1020min。5、亞硫酸鈉溶液滴洗 2 次,每次 2min。

6、流水沖洗 2min。

7、Mayer 蘇木素復(fù)染核 25min。

8、流水沖洗 5min

9、常規(guī)脫水透明,中性樹(shù)膠封固。

染色結(jié)果:

         真菌                        紫紅色

        細(xì)胞核                      藍(lán)色 

備注:顏色深淺很大程度上取決于樣品在過(guò)碘酸溶液和Schiff Reagent 中作用時(shí)間的長(zhǎng)短。

 

陰性對(duì)照(可選)

1、取淀粉酶 1g 溶解于 PBS(pH5.3) 100ml,處理 3060min,與其他樣本共同入過(guò)碘酸溶液。結(jié)果應(yīng)為陰性。

2、(備選方案)取唾液片(過(guò)濾后用)處理 3060min,與其他樣本共同入過(guò)碘酸溶液。結(jié)果應(yīng)為陰性。

3(備選方案)如果對(duì)照片采用其自身樣本,對(duì)照片不經(jīng)過(guò)碘酸溶液這一步,直接入 Schiff

Reagent。結(jié)果應(yīng)為陰性。

 

注意事項(xiàng):

1、過(guò)碘酸氧化時(shí)間不宜過(guò)久,氧化時(shí)的溫度以 1822℃最佳。

2、過(guò)碘酸溶液、Schiff Reagent 使用時(shí)避免接觸過(guò)多的陽(yáng)光和空氣,使用前最好提前

30min 取出恢復(fù)至室溫,避光暗處使用。

3、過(guò)碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用時(shí)間非常重要,該依據(jù)切片厚薄、細(xì)胞或組織的類(lèi)別等決定。

4、如常規(guī)切片建議用糖原PAS 染色液(DG0005),其過(guò)碘酸和蘇木素濃度都相對(duì)高。

5、為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。

 

有效期: 12 個(gè)月有效。

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